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Calendário científico de dezembro de 2022

Que testes laboratoriais devem ser realizados para diagnosticar LAD-III?

Avaliação da história clínica do doente, hemograma completo, testes de agregação plaquetária por agregometria por transmissão de luz (LTA), avaliação de glicoproteínas de plaquetas por citometria de fluxo e análise genética.

Testes de agregação plaquetária por agregometria por transmissão de luz (LTA), avaliação de glicoproteínas de plaquetas por citometria de fluxo e análise genética.

Hemograma completo, testes de agregação plaquetária por agregometria por transmissão de luz (LTA) e avaliação de glicoproteínas de plaquetas por citometria de fluxo.

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Deficiência de adesão leucocitária (LAD)

As síndromes de deficiência de adesão leucocitária (LAD) constituem um grupo de imunodeficiências primárias raras classificadas em três subtipos: LAD-I, LAD-II e LAD-III. Todas as três são caracterizadas por leucocitose acentuada, adesão leucocitária enfraquecida e infeções recorrentes. [1, 2, 3, 4]

A LAD é causada por um defeito genético que é herdado de maneira autossómica recessiva. A LAD-I é causada por mutações no gene ITGB2 (21q22.3), que codifica a integrina β2 CD18. [2, 5] A LAD-II é causada por uma mutação no gene SLC35C1 (11p11.2), que codifica o transportador de fucose guanosina 5'-difosfato (GDP), e a LAD-III resulta de uma mutação no gene FERMT3 (11q13.1), que codifica kindlin-3 de células hematopoiéticas. [5, 6, 7, 8, 9] Essas mutações resultam em adesão celular enfraquecida, o que leva, entre outras coisas, à migração celular restrita dos vasos para o local da infeção. [6, 7, 8, 9]

A cascata de adesão leucocitária

Em condições fisiológicas, a cascata de adesão leucocitária é iniciada com o aprisionamento e enrolamento de leucócitos no endotélio, seguida por ativação de leucócitos induzida por quimiocina, rolamento lento, adesão leucocitária firme e retenção, aumento da adesão por ligação de integrina, rastreamento e transmigração leucocitária.

Os principais atores moleculares envolvidos nos processos adesivos incluem selectinas e seus ligantes glicoproteicos, quimiocinas e seus receptores, integrinas e receptores de adesão da família das imunoglobulinas. α4- e β2-integrina desempenham um papel essencial no curso da cascata. A ativação da integrina ocorre após a sinalização desencadeada por quimiocina (sinalização de dentro para fora) em cooperação com vias ativadas por selectina. As integrinas ativadas contribuem para o enrolamento lento, a adesão firme, o rastreamento e a migração transendotelial. [10]

A mutação do gene ITGB2 (característica da LAD-I) causa a disfunção da integrina β2, que já não consegue cumprir sua função na cascata de adesão leucocitária.

Manifestação clínica dos diferentes subtipos de LAD

Os primeiros sintomas de LAD aparecem durante a infância ou na primeira infância. [5]

Os doentes com LAD-I com frequência apresentam infeções recorrentes (bacterianas ou fúngicas) potencialmente letais no sistema respiratório, pele e membranas mucosas. A ausência de sinais típicos de inflamação, como inchaço, vermelhidão ou formação de pus no local da infeção, é uma característica importante da LAD-I. Outras indicações da presença de LAD-I incluem o descolamento tardio do cordão umbilical (após o 14º dia de vida), que muitas vezes ocorre somente em relação com infeção do coto umbilical, e cicatrização de feridas retardada. [5, 11]

Mutações no gene SLC35C1 (11p11.2), que codifica o transportador de fucose guanosina-5'-difosfato (GDP) localizado no aparelho de Golgi, resultam no quadro clínico de LAD-II. Este transportador específico de fucose transloca a GDP-fucose do citosol para o aparelho de Golgi, onde é utilizado como substrato para a fucosilação. O transportador de açúcar defeituoso leva à glicosilação enfraquecida de ligantes de selectina, o que, por sua vez, leva ao comprometimento do recrutamento e enrolamento de leucócitos. Os doentes com LAD-II com frequência também apresentam infeções bacterianas recorrentes, mas estas são frequentemente menos severas do que aquelas observadas na LAD-I. A perda dentária precoce devido à periodontite severa, bem como défices intelectuais e atraso do crescimento caracterizam o quadro clínico. Os doentes com LAD-II não possuem os antigénios dos grupos sanguíneos H e Lewis Lea e Leb. [5, 9, 11]

A mutação no gene FERMT3 (11q13.1) em doentes com LAD-III resulta num defeito na ativação de todas as β-integrinas (β1, β2 e β3), mas expressão de integrina normal. Isso causa um quadro clínico idêntico ao dos doentes com LAD-I. Além disso, devido à disfunção da β3-integrina, as plaquetas são incapazes de aderir à parede do vaso, o que resulta em episódios hemorrágicos semelhantes aos de um doente com trombastenia de Glanzmann (GT). Estes doentes tendem a ter episódios hemorrágicos mais longos do que pessoas saudáveis ​​e têm hemorragias nasais e gengivais mais frequentes, bem como hematomas. [4, 5, 6, 7, 8, 11] Menos de 40 casos de LAD-III foram notificados até agora. [12]

Diagnóstico de LAD e seus subtipos

O diagnóstico de LAD inclui o doente individual e antecedentes familiares, bem como o exame do hemograma, função plaquetária e glicoproteínas da superfície celular. Um diagnóstico final é sempre alcançado por análise genética. [13]

O diagnóstico de LAD-I é baseado num hemograma completo quantitativo com evidência de leucocitose neutrofílica. A expressão de β2-integrina diminuída (CD11, CD18) nos leucócitos é detetada por citometria de fluxo. A deteção de mutações ITGB2 confirma o diagnóstico. [13]

O diagnóstico de LAD-II é baseado em descobertas clínicas e num hemograma completo com evidência de leucocitose neutrofílica. O determinação do grupo sanguíneo é essencial para detetar o grupo sanguíneo Bombay, que está presente em todos os doentes com LAD-II, mas não muito frequentemente na população em geral. O diagnóstico final é baseado na deteção genética de mutações no gene SLC35C1 (11p11.2). [9, 13]

O diagnóstico de LAD-III é baseado em descobertas clínicas e em um hemograma completo com evidência de leucocitose neutrofílica. Testes de agregação plaquetária por agregometria de transmissão de luz (LTA) com utilização dos agonistas listados na Tabela 1 e análise de glicoproteínas de superfície por citometria de fluxo (ver Tabela 2) são utilizados para diagnóstico adicional. [13] A diferenciação entre GT quantitativo (tipo I e II) e LAD-III requer a quantificação da expressão da glicoproteína plaquetária por citometria de fluxo.

Tabela 1 Agregação plaquetária em LAD-III por agonista [14]

Agonista Resultado
Epinefrina Agregação diminuída/ausente
ADP Agregação diminuída/ausente
Colagénio Agregação diminuída/ausente
α-trombina Agregação diminuída/ausente
TRAP6 Agregação diminuída/ausente
U46619 Agregação diminuída/ausente
CRP Agregação diminuída/ausente
Convulxin Agregação diminuída/ausente
PAR-4 ap Agregação diminuída/ausente
PAF Agregação diminuída/ausente
A23187 Agregação diminuída/ausente
Ristocetina Resposta normal

 

Tabela 2 Deteção de glicoproteínas em doentes LAD-III por citometria de fluxo

Glicoproteína Resultado
Expressão de GPIIb (CD41) Normal
Expressão de GPIIIa (CD61) Normal
Epítopo de ativação GPIIb/IIIa (PAC-1) Ativação defeituosa

 

Em doentes com LAD-III, o diagnóstico final é obtido pela deteção genética da mutação no gene FERMT3 (11q13.1). [13, 14, 15]

Opções terapêuticas

O tratamento dos doentes é limitado principalmente ao controle das infeções com antibióticos e antimicóticos. Os doentes com LAD-III também podem receber transfusões, se necessário. Atualmente, os doentes com LAD-I e LAD-III somente podem ser curados por transplante de células estaminais hematopoiéticas (transplante de medula óssea). A terapia génica pode ser uma nova opção terapêutica para doentes com LAD-I – estudos estão a ser realizados atualmente. [16, 17, 18] Em doentes com LAD-II, a resposta imunitária pode ser melhorada através da substituição da fucose. [19] Estes doentes normalmente têm uma esperança de vida consideravelmente maior do que os doentes com LAD-I e LAD-III..

Referências

[1] Etzioni A et al. (1992): Recurrent Severe Infections Caused by a Novel Leukocyte Adhesion Deficiency. N Engl J Med; 327: 1789–1792.

[2] Anderson DC, Springer TA. (1987): LEUKOCYTE ADHESION DEFICIENCY: An Inherited Defect in the Mac-I, LFA-l, and pI50,95 Glycoproteins. Ann Rev Med; 38: 175–194.

[3] Mathew EC, Shaw JM, Bonilla FA, Law SK, Wright DA. (2000): A novel point mutation in CD18 causing the expression of dysfunctional CD11/CD18 leucocyte integrins in a patient with leucocyte adhesion deficiency (LAD). Clin Exp Immunol; 121: 133–138.

[4] Kuijpers TW et al. (1997): Leukocyte adhesion deficiency type 1 (LAD-1)/variant: a novel immunodeficiency syndrome characterized by dysfunctional β2 integrins. J Clin Invest; 100: 1725–1733.

[5] Hanna S, Etzioni A. (2012): Leukocyte adhesion deficiencies. Annals of the New York Academy of Sciences; 1250: 50–55.

[6] McDowall A et al. (2003): A novel form of integrin dysfunction involving β1, β2, and β3 integrins. J Clin Invest; 111: 51–60.

[7] Svensson L et al. (2009): Leukocyte adhesion deficiency-III is caused by mutations in KINDLIN3 affecting integrin activation. Nat Med; 15(3): 306–312.

[8] Meller J et al. (2012): Novel aspects of Kindlin-3 function in humans based on a new case of leukocyte adhesion deficiency III. J Thromb Haemost; 10: 1397–1408.

[9] Hidalgo A et al. (2003): Insights into leukocyte adhesion deficiency type 2 from a novel mutation in the GDP-fucose transporter gene. Blood; 101(5): 1705–1712.

[10] Mitroulis I et al. (2015): Leukocyte integrins: Role in leukocyte recruitment and as therapeutic targets in inflammatory disease. Pharmacol Ther; 147: 123–135.

[11] Harris ES, Weyrich AS, Zimmerman GA. (2013): Lessons from rare maladies: leukocyte adhesion deficiency syndromes. Curr Opin Hematol; 20(1): 16–25.

[12] Saultier P, Szepetowski S, Canault M et al. (2018): Long-term management of leukocyte adhesion deficiency type III without hematopoietic stem cell transplantation. Haematologica; 103(6): e264–e267.

[13] Etzioni A. (2007): Leukocyte Adhesion Deficiencies: Molecular Basis, Clinical Findings, and Therapeutic Options. In: Shurin MR, Smolkin YS. (eds.) Immune-Mediated Diseases. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 601; Springer, New York, NY.

[14] Gresele P for the Subcommittee on Platelet Physiology. (2015): Diagnosis of inherited platelet function disorders: guidance from the SSC of the ISTH. J Thromb Haemost; 13: 314–322.

[15] Manukjan G et al. (2020): Novel variants in FERMT3 and RASGRP2—Genetic linkage in Glanzmann-like bleeding disorders. Pediatr Blood Cancer; 67: e28078.

[16] Almarza E et al. (2019): Gene Therapy for Lad-I Immunodeficiency: Preclinical Evaluation of HSC Transduction Under Optimized GMP-Conditions. Blood; 134 (Supplement_1): 5751.

[17] Mesa-Núñez C et al. (2022): Preclinical safety and efficacy of lentiviral-mediated gene therapy for leukocyte adhesion deficiency type I. Molecular Therapy - Methods & Clinical Development; 26: 459–470.

[18] Kohn DB et al. (2021): A Phase 1/2 Study of Lentiviral-Mediated Ex-Vivo Gene Therapy for Pediatric Patients with Severe Leukocyte Adhesion Deficiency-I (LAD-I): Interim Results. Blood; 138 (Supplement_1): 2932.

[19] Marquardt T et al. (1999): Correction of Leukocyte Adhesion Deficiency Type II with Oral Fucose. Blood; 94(12): 3976–3985.

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