Calendario científico diciembre de 2025
Análisis del líquido sinovial de un paciente con artroplastia de rodilla
¿Qué componente principal aumenta la viscosidad y la elasticidad del líquido sinovial?
Ácido hialurónico
Lubricina
Fibrinógeno
Albúmina
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Fundamentación científica
El diagnóstico de los trastornos articulares se basa en una combinación de observaciones y métodos, entre los que se incluyen los signos clínicos, los hallazgos radiológicos y los análisis de laboratorio de líquido sinovial [1]. El líquido sinovial se origina como un ultrafiltrado del plasma que atraviesa la membrana sinovial hacia la cavidad articular, donde se enriquece con ácido hialurónico secretado por las células del revestimiento sinovial [1]. El análisis de laboratorio del líquido sinovial incluye diversas pruebas, que van desde el examen microbiológico y el recuento y diferencial celular hasta la cuantificación de proteína C reactiva (PCR), la medición de glucosa y la evaluación de la presencia de cristales. El tratamiento de los pacientes con infecciones articulares depende en gran medida del recuento de leucocitos, por lo que es importante llevar a cabo un recuento y una diferenciación precisos [2-4].
El recuento celular en el líquido sinovial puede efectuarse manualmente, utilizando una cámara de recuento, o automáticamente, mediante un analizador hematológico. Si bien el método manual se considera el estándar de referencia, presenta limitaciones inherentes, como un tiempo de respuesta prolongado, alta imprecisión y variabilidad interpersonal [1-2, 4]. Por estas razones, los métodos automatizados se han consolidado como la práctica habitual para el análisis de fluidos corporales [1, 2]. Sin embargo, las muestras sinoviales requieren una validación rigurosa, ya que diversos estudios han demostrado que los métodos automatizados pueden generar recuentos falsamente elevados, especialmente en pacientes con artroplastia articular [2, 4-5].
El personal de laboratorio debe prestar especial atención a la detección de interferencias que den lugar a recuentos de leucocitos falsamente elevados, particularmente en el análisis del líquido sinovial de pacientes con artroplastia de rodilla, con el fin de evitar informar de resultados erróneos [2]. Vanrenterghem y otros (2024) observaron que el depósito de partículas no celulares en el líquido sinovial podría ser una causa de interferencias en el recuento de leucocitos que se obtiene con los analizadores automáticos [2]. Pearson y otros (2021) describen la metalosis, una complicación poco frecuente que se produce debido a la erosión de componentes metálicos y la liberación de partículas metálicas después de una artroplastia, como una posible causa de recuentos celulares falsamente elevados en los analizadores automáticos [4]. Ambos autores plantean la hipótesis de que estas partículas no celulares podrían ser contabilizadas erróneamente como células nucleadas, lo que resultaría en un recuento celular falsamente elevado [2, 4].
Así, Vanrenterghem y otros (2024) introdujeron un flujo de trabajo basado en la interpretación de diagramas de dispersión. La identificación de un patrón distintivo en forma de plátano en el diagrama de dispersión WDF durante su inspección visual permitió al laboratorio evitar la sobreestimación del recuento de leucocitos. Este hallazgo permitió seguir utilizando los analizadores hematológicos automáticos, incluso en pacientes con artroplastia, manteniendo la precisión de los informes de recuento celular [2].
Resultados del caso
Un paciente con artroplastia de rodilla fue sometido a una tomografía computarizada junto con una artrocentesis con el objetivo de identificar la causa de la inflamación de la articulación. El análisis de la muestra de líquido sinovial con el analizador hematológico XN en el modo Body Fluid (BF) reveló valores muy elevados de leucocitos (8,215 × 103/µL), predominantemente células mononucleares (MN# 7,861 × 103/µL, MN % 95,7 %).
El diagrama de dispersión WDF mostró un patrón atípico en forma de plátano con una alta concentración de partículas en todo el diagrama, incluida la zona de alta intensidad de luz fluorescente (zona azul oscuro). Los grupos celulares no estaban suficientemente separados.
Se preparó una muestra mediante citocentrifugación, la cual fue examinada microscópicamente. En esta se observaron predominantemente partículas de desechos de origen desconocido, con escasa o nula presencia de leucocitos (véase la fig. 3). Este hallazgo apuntaba a la posibilidad de que dichas partículas no celulares podrían estar interfiriendo en el recuento celular automatizado del analizador, generando un recuento de leucocitos falsamente elevado.
La tomografía computarizada del paciente reveló complicaciones compatibles con la formación de un quiste y el aflojamiento del componente tibial.
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References
[1] Saadalla A et al. (2020): Evaluation of automated synovial fluid total cell count and percent polymorphonuclear leukocytes on a Sysmex XN-1000 analyzer for identifying patients at risk of septic arthritis. Clin Chim Acta; 510:416–420.
[2] Vanrenterghem M et al. (2024): Laboratory workflow for optimizing leukocyte count and differential in synovial fluids on Sysmex XN-1000. Int J Lab Hematol; 46(4):637–645.
[3] Parvizi J et al. (2018): The 2018 definition of periprosthetic hip and knee infection: an evidence-based and validated criteria. J Arthroplasty; 33(5):1309–1314.e2.
[4] Pearson LN et al. (2021): Reliability of Total Nucleated Cell Counts in the Setting of Hip Arthroplasty. J Appl Lab Med; 6(3):679–687.
[5] Deirmengian CA et al. (2020): False-positive automated synovial fluid white blood cell counting is a concern for both hip and knee arthroplasty aspirates. J Arthroplasty; 35(6):S304–S307.
